المستوى:
خبير
عدد الأسئلة:
١٢ سؤالاً
الزمن:
٦ دقائق

أسئلة مقابلة مشرف مختبر طبي مع الإجابة

قرارات ومواقف صعبة يُسأل عنها الخبراء في مقابلات وظيفة فني مختبر طبي: الأحياء الدقيقة، والسلامة الحيوية وأخلاقيات المهنة، والكيمياء الحيوية والدمويات، وبنك الدم والمناعة، وجمع العينات وتجهيزها، وضبط الجودة واعتماد النتائج. في آخرها تقرير بنقاط ضعفك.

المهارات: ضبط الجودة واعتماد النتائج، الكيمياء الحيوية والدمويات، بنك الدم والمناعة، الأحياء الدقيقة، جمع العينات وتجهيزها، السلامة الحيوية وأخلاقيات المهنة

تعليمات: لكل سؤال إجابة صحيحة واحدة. إن لم تعرف الإجابة فاختر «لا أعرف»، وسيدلّك التقرير على ما تراجعه.

السؤال الأول: حسبتَ مقياس سيغما Sigma metric لأحد فحوص الكيمياء فكان 6، إذ إن الخطأ الكلي المسموح TEa يساوي 10% والانحياز bias يساوي 1% ومعامل التباين CV يساوي 1.5%. ما استراتيجية ضبط الجودة الأنسب لهذا الفحص؟

اختر إجابتك لتبدأ الاختبار

كل الأسئلة مع الإجابات (١٢ سؤالاً)

جرّب المقابلة أولاً، ثم افتح الإجابات لتراجعها مع الشرح.
  1. ١. حسبتَ مقياس سيغما Sigma metric لأحد فحوص الكيمياء فكان 6، إذ إن الخطأ الكلي المسموح TEa يساوي 10% والانحياز bias يساوي 1% ومعامل التباين CV يساوي 1.5%. ما استراتيجية ضبط الجودة الأنسب لهذا الفحص؟

    • قواعد Westgard المتعددة كاملة مع أربعة مستويات من مواد الضبط في كل تشغيل، لأن ارتفاع قيمة سيغما يعني تبايناً أكبر في الطريقة
    • قاعدة بسيطة مثل 1-3s بمستويين من مواد الضبط، فالطريقة تكشف الأخطاء المهمة برفض كاذب قليل
    • اعتماد قاعدة 1-2s قاعدةً للرفض حتى تُكتشف أصغر الانحرافات مبكراً قبل أن تؤثر في أي نتيجة من نتائج المرضى
    • الاستغناء عن مواد الضبط اليومية والاكتفاء بالمعايرة الدورية التي يوصي بها مصنّع الجهاز مع مراجعتها مرة كل شهر

    الشرح: كلما ارتفعت قيمة سيغما اتسع هامش الطريقة عن الخطأ المسموح، فتكفي قاعدة بسيطة بعدد قليل من مواد الضبط لكشف الأخطاء المهمة مع أقل رفض كاذب. يخلط بعض المرشحين بين سيغما المرتفعة والتباين المرتفع، أو يظنون أن 1-2s أدق مع أنها تسبب رفضاً كاذباً كثيراً.

  2. ٢. عند التحقق من جهاز كيمياء جديد قبل تشغيله، قارنتَ نتائج 40 عينة من المرضى بين الجهاز الجديد والجهاز القديم، فكان معامل الارتباط r يساوي 0.99. هل يكفي ذلك للحكم بأن الطريقتين متوافقتان ويمكن استبدال إحداهما بالأخرى؟

    • لا، فالمقارنة الصحيحة تُجرى على مواد ضبط الجودة بدلاً من عينات المرضى، لأن قيمها معروفة وثابتة ولا تتأثر بحالة المريض
    • لا، فيجب أن يصل r إلى 1.000 تماماً قبل اعتماد أي جهاز جديد في المختبر السريري للتأكد من تطابق النتائج
    • لا، فالارتباط القوي لا ينفي وجود انحياز ثابت أو نسبي، ويجب تقدير الانحياز ومقارنته بالحد المسموح
    • نعم، فقيمة r البالغة 0.99 أو أكثر تعني أن الفرق بين الطريقتين مهمل، فيُعتمد الجهاز الجديد مباشرة دون أي تحليل إضافي

    الشرح: معامل الارتباط يقيس قوة العلاقة الخطية لا مدى التطابق، فقد تكون r عالية جداً مع انحياز كبير، لذلك يُقدَّر الانحياز بمخطط الفروق Bland-Altman أو بالانحدار مثل Passing-Bablok ويُقارن بالخطأ المسموح. يقع كثيرون في خطأ اعتبار r العالية دليلاً على قابلية التبادل بين الطريقتين.

  3. ٣. مريض لديه ورم نخامي كبير يتجاوز 3 سم في التصوير، وجاءت نتيجة البرولاكتين prolactin المقيسة بطريقة مناعية ساندويتش sandwich immunoassay مرتفعة ارتفاعاً بسيطاً فقط، فاتصل الطبيب مستغرباً. ما الإجراء المخبري الأنسب؟

    • اعتماد النتيجة كما هي مع تعليق بأنها تتوافق مع تأثير ضغط الساق النخامية stalk effect دون فحوص إضافية
    • إعادة التحليل بعد تخفيف العينة لاستبعاد تأثير الخطّاف high-dose hook effect
    • إعادة تحليل العينة نفسها دون تخفيف على الجهاز ذاته للتأكد من تكرار النتيجة قبل إبلاغ الطبيب بها
    • إجراء ترسيب بالبولي إيثيلين غلايكول PEG للكشف عن البرولاكتين الكبير macroprolactin الذي يفسر هذه النتيجة

    الشرح: في الطرق المناعية الساندويتش يُشبع التركيز الهائل للمستضد أجسام الالتقاط والكشف معاً فتظهر النتيجة منخفضة زيفاً، والتخفيف يكشف القيمة الحقيقية المرتفعة جداً. يلجأ بعضهم إلى فحص macroprolactin مع أنه يرفع النتيجة زيفاً ولا يخفضها، أو يقبل تفسير ضغط الساق قبل استبعاد تأثير الخطّاف.

  4. ٤. أظهر جهاز تعداد الدم لعينة EDTA مع تنبيهات القيم التالية: RBC 2.1 × 10^12/L وHb 11.9 g/dL وMCV 118 fL وMCHC 48 g/dL، وظهرت في اللطاخة تكتلات واضحة من الكريات الحمراء. ما التصرف الصحيح؟

    • إصدار النتائج كما هي مع تعليق يقترح فقر دم كبير الكريات وطلب فحص فيتامين B12 وحمض الفوليك
    • حفظ العينة في الثلاجة مدة نصف ساعة لتثبيت الخلايا، ثم إعادة تحليلها والاعتماد على النتيجة الجديدة
    • تدفئة العينة عند 37°C مدة 15 إلى 30 دقيقة، ثم إعادة تحليلها فوراً وهي دافئة
    • طلب عينة جديدة في أنبوب سيترات الصوديوم وتصحيح النتائج بعامل التخفيف كما يُفعل مع تكتل الصفائح

    الشرح: قيمة MCHC المستحيلة فسيولوجياً مع انخفاض تعداد الكريات الحمراء وارتفاع MCV تشير إلى أضداد باردة cold agglutinins تجعل الجهاز يعدّ التكتلات خلايا كبيرة مفردة، والتدفئة تفك التكتل وتصحح المؤشرات. يخلط بعضهم بينها وبين تكتل الصفائح فيطلب أنبوب سيترات لا يحل المشكلة، أو يبرّد العينة فيزيدها سوءاً.

  5. ٥. مريض بالورم النقوي المتعدد multiple myeloma يُعالَج بدواء daratumumab المضاد لـ CD38، وجاء تحرّي الأضداد antibody screen ولوحة الخلايا panel إيجابيين مع جميع الخلايا في طور AHG، بينما تحديد ABO وRhD طبيعي. ما النهج الصحيح لتجهيز الدم له؟

    • اعتبار النتيجة ضداً ذاتياً دافئاً وصرف أقل الوحدات عدم توافق دون استكمال البحث عن الأضداد الخيفية
    • طلب إيقاف الدواء 48 ساعة ثم إعادة تحري الأضداد، لأن أثره في الفحوص المخبرية يزول سريعاً بعد آخر جرعة
    • معالجة خلايا الكواشف بـ DTT لإجراء التحري والتوافق، مع صرف وحدات سلبية لمستضد K
    • اعتبار تحديد ABO غير موثوق وصرف كريات حمراء من الفصيلة O سلبية RhD فقط طوال فترة العلاج

    الشرح: يرتبط daratumumab بمستضد CD38 الموجود على خلايا الكواشف فيسبب تفاعلاً شاملاً قد يستمر حتى ستة أشهر بعد آخر جرعة، ومعالجة الخلايا بـ DTT تزيل هذا التداخل لكنها تتلف مستضدات Kell، لذا تُصرف وحدات سلبية K ما لم يكن المريض إيجابياً له. يخطئ من يظن أن الأثر يزول خلال أيام أو أن تحديد ABO يتأثر به.

  6. ٦. أمٌّ سلبية RhD ليس لديها ضد anti-D ولدت طفلاً إيجابياً RhD، وجاء اختبار الوردة rosette test لعينتها بعد الولادة إيجابياً. ما الخطوة التالية الصحيحة؟

    • قياس حجم النزف كمياً بـ Kleihauer-Betke أو flow cytometry لتحديد جرعة RhIG
    • إعطاؤها جرعة قياسية واحدة من RhIG دون فحوص أخرى، لأن الجرعة القياسية تكفي لأي نزف جنيني أمومي مهما كان حجمه
    • عدم إعطائها RhIG إطلاقاً، لأن إيجابية اختبار الوردة تعني أنها تحسست مسبقاً وكوّنت ضد anti-D بالفعل
    • تأجيل القرار وتكرار اختبار الوردة بعد 72 ساعة للتأكد من النتيجة قبل إعطاء الأم أي جرعة من RhIG

    الشرح: اختبار الوردة فحص تحرٍّ نوعي يكشف خلايا جنينية إيجابية D بكمية قد تتجاوز ما تغطيه الجرعة القياسية، ولا يحدد حجم النزف، فيلزم القياس الكمي لحساب عدد الجرعات. يظن بعضهم خطأً أن الإيجابية تعني وجود ضد anti-D، مع أنها تدل على خلايا جنينية في دم الأم لا على تحسس.

  7. ٧. لماذا توصي إرشادات CLSI باستخدام قرص cefoxitin بدلاً من قرص oxacillin للكشف عن مقاومة Staphylococcus aureus للميثيسيلين بطريقة انتشار الأقراص؟

    • لأن cefoxitin هو المضاد الحيوي المفضل لعلاج عدوى MRSA، فتعكس نتيجته القرار العلاجي مباشرة للطبيب
    • لأن إنزيم البنسيليناز الذي تفرزه المكورات العنقودية يحلّل oxacillin داخل القرص فتظهر حساسية كاذبة
    • لأن cefoxitin محفّز أقوى لتعبير mecA، فيعطي فصلاً أوضح بين السلالات المقاومة والحساسة
    • لأن قرص cefoxitin يكشف مقاومة الميثيسيلين ومقاومة vancomycin في الاختبار نفسه فيوفر قرصاً إضافياً

    الشرح: يحفز cefoxitin تعبير جين mecA المسؤول عن PBP2a بقوة أكبر، فتظهر المقاومة بوضوح حتى في السلالات غير المتجانسة المقاومة heteroresistant، بينما نتائج قرص oxacillin أقل موثوقية. يظن بعضهم أن cefoxitin يُختار لأنه علاج لـ MRSA، مع أنه مجرد بديل للكشف ولا يُستخدم لعلاجها.

  8. ٨. لماذا تُسحب مزارع الدم للبالغين عادةً على هيئة مجموعتين two sets من موقعَي وخز منفصلين، بدلاً من سحب الحجم الكلي نفسه من موقع واحد؟

    • لأن سحب حجم كبير من وريد واحد يسبب انحلالاً دموياً داخل القارورات يثبط نمو البكتيريا ويؤخر اكتشافها
    • لأن البكتيريا لا تتوزع بالتساوي في دم الذراعين، فيزيد السحب من موقعين مختلفين فرصة اكتشافها في أحدهما على الأقل
    • لأن كل مجموعة تُخصص لنوع مختلف من الزرع، فالمجموعة الأولى للبكتيريا الهوائية والثانية للبكتيريا اللاهوائية
    • لأن نموّ بكتيريا الجلد في المجموعتين يرجّح تجرثماً حقيقياً، ونموها في واحدة فقط يرجّح التلوث

    الشرح: البكتيريا المتعايشة على الجلد مثل coagulase-negative staphylococci قد تكون ملوِّثاً أو مسبباً حقيقياً، وظهورها في مجموعتين من وخزتين منفصلتين يجعل التلوث مستبعداً، أما مع موقع واحد فلا يمكن التمييز. يظن بعضهم أن المجموعتين للهوائي واللاهوائي، مع أن كل مجموعة تضم القارورتين معاً.

  9. ٩. أثناء تشغيل جهاز طرد مركزي ليس فيه حاويات محكمة الإغلاق sealed buckets، سمعت صوت انكسار أنبوب عينة دم. ما التصرف الصحيح؟

    • إطفاء الجهاز وإبقاء غطائه مغلقاً نحو 30 دقيقة، ثم تنظيفه بمعدات الوقاية وملقط ومطهر مناسب
    • إطفاء الجهاز وفتحه فوراً، ثم جمع الزجاج المكسور باليد المغطاة بالقفاز ومسح الحوض جيداً بالكحول الطبي
    • ترك الدورة تكتمل حتى لا تتأثر بقية العينات، ثم إخراج الأنابيب السليمة ومتابعة العمل وتنظيف الجهاز لاحقاً
    • إطفاء الجهاز وفتح غطائه فوراً لإخراج الأنابيب السليمة بسرعة قبل أن يصلها الدم المنسكب ويلوث ملصقاتها

    الشرح: الانكسار داخل جهاز يدور يولّد رذاذاً معدياً aerosols، وإبقاء الغطاء مغلقاً نحو 30 دقيقة يسمح بترسبه قبل الفتح، ثم يُلتقط الزجاج بملقط لا باليد. يميل كثيرون إلى الفتح الفوري لإنقاذ العينات الأخرى، فيعرّضون أنفسهم للرذاذ في أخطر لحظاته.

  10. ١٠. اكتشفت بعد إصدار التقرير أن نتيجة أدخلتها يدوياً في نظام معلومات المختبر LIS كانت خاطئة بسبب خطأ في الإدخال، وقد اطّلع عليها الطبيب المعالج. ما أفضل تصرف؟

    • إصدار تقرير مصحَّح يُبقي النتيجة الأصلية قابلة للتتبع، وإبلاغ الطبيب مباشرة وتوثيق الخطأ
    • حذف النتيجة الخاطئة من سجل المريض نهائياً ثم إدخال الصحيحة مكانها، حتى لا يختلط الأمر على الطبيب لاحقاً
    • تعديل النتيجة في النظام بهدوء دون إشعار أحد، فالقيمة الصحيحة ستظهر للطبيب عند مراجعته التالية لملف المريض
    • انتظار استفسار الطبيب قبل أي تعديل، فإن لم يسأل عنها فذلك يعني غالباً أنها لم تؤثر في قراره العلاجي

    الشرح: تشترط معايير الاعتماد مثل ISO 15189 أن يُميَّز التقرير المصحح بوضوح وأن تبقى النتيجة الأصلية محفوظة لأن قرارات علاجية ربما بُنيت عليها، مع إبلاغ الطبيب فوراً. يظن بعضهم أن الحذف أو التعديل الصامت يمنع الالتباس، بينما هو يُخفي الخطأ ويقطع سجل التتبع.

  11. ١١. مريض منوَّم يتلقى محلولاً وريدياً في ساعده الأيسر، وفي ذراعه اليمنى ناسور شرياني وريدي AV fistula للغسيل الكلوي، والمطلوب عينة دم وريدي لفحوص الكيمياء. ما الطريقة الصحيحة؟

    • السحب من الذراع اليمنى بعيداً عن الناسور قليلاً، لأن أوردتها ممتلئة وواضحة ويسهل الوصول إليها دون إيقاف المحلول
    • السحب من الذراع اليسرى فوق موضع المحلول مع ربط العاصبة بإحكام، لأن الدم هناك لم يختلط بالمحلول الوريدي بعد
    • طلب إيقاف المحلول دقيقتين على الأقل، ثم السحب من وريد أسفل موضعه والتخلص من أول 5 mL
    • سحب العينة مباشرة من القنية الوريدية دون إيقاف المحلول، لأنها متصلة بالوريد وتغني المريض عن وخزة جديدة

    الشرح: توصي إرشادات CLSI عند تعذر استخدام الذراع الأخرى بإيقاف المحلول دقيقتين على الأقل والسحب أسفل موضعه مع التخلص من أول 5 mL وتوثيق ذلك، أما ذراع الناسور فلا يُسحب منها أبداً حفاظاً عليه. يخطئ بعضهم بالسحب فوق موضع المحلول ظناً أن الدم هناك نقي، مع أن الوريد يحمل المحلول نحو القلب فيخفف العينة ويلوثها.

  12. ١٢. يستعد المستشفى لتشغيل نظام أنابيب هوائية pneumatic tube system جديد لنقل العينات إلى المختبر، وطُلب منك قيادة التحقق منه قبل بدء العمل به. ما أفضل طريقة للتحقق؟

    • إرسال حاويات فارغة عبر جميع المسارات وقياس زمن وصولها، لأن سرعة النقل وحدها هي التي تحدد سلامة العينات المنقولة
    • إرسال مواد ضبط الجودة بمستوياتها عبر النظام، والتأكد من بقاء نتائجها ضمن الحدود المقبولة بعد وصولها إلى المختبر
    • الاعتماد على شهادة التحقق الصادرة عن الشركة المصنعة، لأنها اختبرت النظام في ظروف قياسية تغني عن تكرار التجربة محلياً
    • مقارنة أزواج من عينات المرضى، يُنقل أحدها بالنظام والآخر يدوياً، في فحوص حساسة للانحلال مثل K

    الشرح: النقل بالأنابيب الهوائية قد يسبب انحلالاً دموياً بفعل التسارع والاهتزاز، ولا يظهر أثره إلا في عينات دم حقيقية تُقارن بنظيرتها المنقولة يدوياً في فحوص مثل K وLDH ومؤشر الانحلال وفق حدود قبول محددة مسبقاً. يقترح بعضهم إرسال مواد الضبط، لكنها لا تحاكي خلايا دم المريض الحية فلا تكشف الانحلال.

المزيد